Les tutoriels du Pecnot’Lab
Media EïwaRhizobiomeRésEau Sol
  • Introduction
    • Le Pecnot'Lab c'est quoi ?
    • La démarche du RésEau Sol
      • Le Kit Sol Eau
  • protocoles et observations
    • Observations sur le terrain
      • Examen d'un profil de sol
      • Prélèvement d'échantillons
    • Maintenance de la structure
      • Infiltromètre Beerkan
        • Infiltromètre Beerkan simplifié
        • Compléments à la mesure Beerkan
      • Simulateur de pluie Cornell
      • Slake test
      • Stabilité structurale
      • Porosité
    • Activité biologique
      • Carbone du sol
        • Carbone actif POXC
        • Carbone organique par calcination
        • Carbone organique méthode Anne
      • Respiration
        • Respiration par incubation - méthode générale
        • Respiration par incubation de 3 jours
        • Respiromètre de paillasse
        • Respiration - méthode SituResp®
        • Respiration in situ v1
        • Respiration in situ v2
        • Respiration méthode Draëger
      • Litter bag
        • Litter bag méthode Pecnot'Lab
        • Litter bag - Forêt
      • Bait Lamina
      • Glomaline
      • FDA hydrolase
    • Biocénoses
      • Test vers de terre - méthode moutarde
      • Test vers de terre - méthode bêche
      • Etude des invertébrés de surface - Pitfall traps
      • Macrofaune et mésofaune - extraction Berlèse
      • Microfaune - extraction Baermann
      • Spores de champignons
      • Identification de la faune du sol
        • La clé de détermination
        • Informations supplémentaires sur les groupes d'individus
          • Les collemboles
          • Les arachnides
            • Les acariens
          • Les vers : vers de terre et enchytréides
          • Les nématodes
          • Les insectes
    • Disponibilité des nutriments
      • Membrane échangeuse d'ions
      • Disponibilité de l'azote
    • Caractéristiques physico-chimiques
      • Texture - méthode pipette
      • Teneur en eau
      • Suivi de l'humidité du sol
      • pH eau
      • pH KCl
      • pH méthode terrain
      • pH méthode chou rouge
      • Test carbonates
      • Mesure des carbonates
      • Capacité d'échange cationique
    • Cas des sols hydromorphes
      • Indice au pyrophosphate
      • Taux de fibres
        • Taux de fibres - méthode standard
        • Taux de fibres - tourbe fraiche
      • Taux de cendres
      • Evaluation des traits réductiques
        • Identification au thiocyanate de potassium
        • Identification à l'orthophénantroline
        • Identification du manganèse
      • Mesure des nappes
        • Piézomètre data logger
          • Principe
          • Matériel
          • Installation & maintenance
            • Le puits
            • Paramétrage de la sonde
            • Maintenance
          • Collecte des données
            • Sondes TD-Diver
            • Sonde DIY PecnotLab
          • Traitement des données
        • Piézomètre manuel
      • Conductivité hydraulique horizontale
      • Évaluation de la dénitrification
  • Techniques de laboratoire
    • POXC
      • Solution KMnO4
      • Courbes étalon POXC
    • Bait Lamina
      • Gel de cellulose (protocole Biofunctool®)
      • Méthode Terra Protecta
    • Litter bag modèle pecnot'Lab
  • Le coin DIY
    • Les outils DIY du Pecnot'lab
Propulsé par GitBook
Sur cette page
  • Résumé
  • Question posée
  • Source
  • Principe
  • Condition de mise en œuvre
  • Matériel et fourniture
  • Réalisation du protocole
  • Exploitation des données
  • Références
Exporter en PDF
  1. protocoles et observations
  2. Cas des sols hydromorphes

Indice au pyrophosphate

H1 - Protocole pour la caractérisation des tourbes

PrécédentCas des sols hydromorphesSuivantTaux de fibres

Dernière mise à jour il y a 3 mois

Résumé

Les produits de dégradation des tourbes sont d'autant plus foncés que les tourbes sont dégradées. La mesure consiste à extraire ces produits et à évaluer leur coloration.

Question posée

Quel est l'état de dégradation des tourbes ?

Source

d'après Kaila, 1956 , protocole proposé par l'Université de Neuchâtel

Principe

Le pyrophosphate de Na (Na4P2O7) permet d’extraire facilement les produits de dégradation des tourbes: les AF (acides fulviques, de couleur jaune) et les AH (acides humiques, de couleur brune). La solution obtenue après agitation et filtration est de couleur plus ou moins jaune ou brune. La coloration dépend de l’abondance des molécules AF et surtout AH, signes de l’évolution de la matière organique et de sa décomposition chimique. L’intensité de la couleur correspond à l’indice pyro (100 x D.O. à 550 nm). L’indice pyro permet d’affiner la classification des tourbes SSSA (1974). Les limites proposées par Levesque et al. (1980) sont les suivantes :

  • Indice pyro < 15: fibrique

  • Indice pyro 15 à 30: mésique

  • Indice pyro > 30: humique

Un indice bas (1 à 10) est caractéristique d’une tourbe peu évoluée chimiquement, tandis qu’un indice haut (> 50) caractérise une tourbe chimiquement très décomposée.

Condition de mise en œuvre

Matériel et fourniture

  • Broyeuse pour matières organiques (moulin à épices, à café ..).

  • Petites boîtes de stockage PS

  • Agitateur rotatif

  • Balance analytique, précision 0.0001 g.

  • Flacons plastiques PE 100 ml.

  • Ballons jaugés 250 ml.

  • Papiers filtre Whatman/Schleicher & Schull 512 1/2 ou équivalent (plissés), ø 15 cm.

  • Entonnoirs, ø 5 cm

  • Spectrophotomètre.

  • Erlenmeyers de 100 ml.

  • Le réactif est le pyrophosphate de Na 0,025 M (PM Na4P2O7 = 446 g) : dissoudre 11,15 g de Na4P2O7 dans H2O, jauger à 1 litre.

Réalisation du protocole

Le dosage se fait sur de la tourbe séchée à l’air et broyée à 0.5 μm. La prise d’essai est de 0.5 g. Réalisation du blanc: remplacer la prise d’essai par de l’eau désionisée et suivre la procédure.

  1. Peser une prise d’essai dans une barquette à peser en plastique préalablement annotée.

  2. Noter sa masse m, en g. même si la valeur de la pesée initiale n’entre pas dans le calcul de l’indice pyro, il est important de la noter, essentiellement au cas où on a prévu de doser les monophénols de l’extrait (voir chapitre les Monophénols).

  3. Introduire 50 ml de Na4P2O7 0,025 M dans le flacon de 100 ml.

  4. Ajouter les 0,5 g de l’échantillon broyé pesé dans la barquette. Il est impératif d’ajouter l’échantillon après le pyrophosphate, afin que la tourbe se mouille bien et de laisser descendre l’échantillon avant d’agiter le flacon!

  5. Agiter par retournement durant 18 heures (p. ex. de 14h00 à 8h00).

  6. Filtrer sur ballon jaugé de 250 ml à l’aide des filtres 512 1/2.

  7. Laver le résidu à l’eau désionisée par ajouts successifs jusqu’à ce que la goutte de l’extrémité de l’entonnoir soit limpide. Au besoin, placer un papier blanc derrière les entonnoirs pour mieux juger de la couleur de la goutte. Cette phase peut être très longue. Il ne faut pas chercher à forcer l’eau à travers le filtre car des particules grossières risquent de passer.

  8. Compléter jusqu’à la jauge avec de l’eau désionisée.

  9. Mesurer l’absorbance de la solution à 550 nm au spectrophotomètre.

Vider les échantillons ainsi que le reste de pyrophosphate à l’évier sous flux d’eau important.

Exploitation des données

L’indice au pyrophosphate est obtenu en multipliant par 100 la valeur moyenne lue au spectrophotomètre.

On peut comparer la couleur de la solution finale aux couleurs Munsell (SSSA) sur papier chromato (ou sur buvard), en solution plus concentrée (2,5 cm3 d’échantillon dans 1 g Na4P2O7 et 4 ml H2O: pomper la solution). L’indice au pyrophosphate est défini comme la soustraction du chroma de la value du code Munsell. Les échantillons sont classés ainsi: • Indice pyro > ou = 5: fibrique • Indice pyro = 4: mésique • Indice pyro < ou = 3: humique

Références

  • Manuel de laboratoire, Indice au pyrophosphate - Université de Neuchâtel, 2007

Limite des classes SSSA pour l'indice pyrophosphate selon Levesque et al. (1980)