Les tutoriels du Pecnot’Lab
Media EïwaRhizobiomeRésEau Sol
  • Introduction
    • Le Pecnot'Lab c'est quoi ?
    • La démarche du RésEau Sol
      • Le Kit Sol Eau
  • protocoles et observations
    • Observations sur le terrain
      • Examen d'un profil de sol
      • Prélèvement d'échantillons
    • Maintenance de la structure
      • Infiltromètre Beerkan
        • Infiltromètre Beerkan simplifié
        • Compléments à la mesure Beerkan
      • Simulateur de pluie Cornell
      • Slake test
      • Stabilité structurale
      • Porosité
    • Activité biologique
      • Carbone du sol
        • Carbone actif POXC
        • Carbone organique par calcination
        • Carbone organique méthode Anne
      • Respiration
        • Respiration par incubation - méthode générale
        • Respiration par incubation de 3 jours
        • Respiromètre de paillasse
        • Respiration - méthode SituResp®
        • Respiration in situ v1
        • Respiration in situ v2
        • Respiration méthode Draëger
      • Litter bag
        • Litter bag méthode Pecnot'Lab
        • Litter bag - Forêt
      • Bait Lamina
      • Glomaline
      • FDA hydrolase
    • Biocénoses
      • Test vers de terre - méthode moutarde
      • Test vers de terre - méthode bêche
      • Etude des invertébrés de surface - Pitfall traps
      • Macrofaune et mésofaune - extraction Berlèse
      • Microfaune - extraction Baermann
      • Spores de champignons
      • Identification de la faune du sol
        • La clé de détermination
        • Informations supplémentaires sur les groupes d'individus
          • Les collemboles
          • Les arachnides
            • Les acariens
          • Les vers : vers de terre et enchytréides
          • Les nématodes
          • Les insectes
    • Disponibilité des nutriments
      • Membrane échangeuse d'ions
      • Disponibilité de l'azote
    • Caractéristiques physico-chimiques
      • Texture - méthode pipette
      • Teneur en eau
      • Suivi de l'humidité du sol
      • pH eau
      • pH KCl
      • pH méthode terrain
      • pH méthode chou rouge
      • Test carbonates
      • Mesure des carbonates
      • Capacité d'échange cationique
    • Cas des sols hydromorphes
      • Indice au pyrophosphate
      • Taux de fibres
        • Taux de fibres - méthode standard
        • Taux de fibres - tourbe fraiche
      • Taux de cendres
      • Evaluation des traits réductiques
        • Identification au thiocyanate de potassium
        • Identification à l'orthophénantroline
        • Identification du manganèse
      • Mesure des nappes
        • Piézomètre data logger
          • Principe
          • Matériel
          • Installation & maintenance
            • Le puits
            • Paramétrage de la sonde
            • Maintenance
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            • Sonde DIY PecnotLab
          • Traitement des données
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  • Techniques de laboratoire
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      • Courbes étalon POXC
    • Bait Lamina
      • Gel de cellulose (protocole Biofunctool®)
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  1. protocoles et observations
  2. Biocénoses
  3. Identification de la faune du sol
  4. Informations supplémentaires sur les groupes d'individus

Les nématodes

Les clés de détermination de leur groupe fonctionnel

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Dernière mise à jour il y a 4 ans

On observe les nématodes au microscope, après leur extraction du sol par un .

On les reconnaît au microscope grâce à :

  • leur corps allongé, lisse et transparent

  • leurs déplacements dans l'eau par torsions ou ondulations

  • leur tube digestif et pièces buccales visibles

C'est la pièce buccale (ou pharynx) du nématode qui va indiquer son régime alimentaire, et donc, son groupe fonctionnel. Ils peuvent manger des racines, des bactéries, d'autres nématodes, ou encore des champignons.

Pour ceux qui veulent aller plus loin

Un site pour identifier les pièces buccales des nématodes et les espèces :

montage Baermann
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Anatomie du nématode